Os Insaponificáveis de Soja e Abacate no Tratamento da Osteoartrite do Joelho

18 de abril de 2018 | Por

A osteoartrite (OA) é a forma mais comum de artrite que afeta milhões de pessoas em todo o mundo e gera custos importantes para o seguro social. Recentemente, a Sociedade Internacional de Pesquisa em Osteoartrite (OARSI) definiu OA como desordem envolvendo articulações móveis caracterizadas por estresse celular e degradação da matriz extracelular iniciada por micro e macro-lesão que ativa respostas de reparo mal adaptadas, incluindo vias pró-inflamatórias da imunidade inata. 

A doença manifesta-se primeiro como um desarranjo molecular (metabolismo anormal do tecido articular) seguido por desarranjos anatômicos e ou fisiológicos (caracterizados pela degradação da cartilagem, remodelação óssea, formação de osteófitos, inflamação articular e perda da função articular normal), que podem culminar em doença. 

As principais características da doença são uma degradação progressiva da cartilagem e do menisco, uma inflamação da membrana sinovial e um remodelamento ósseo subcondral anormal, levando à esclerose.

As alterações mais estruturais observadas na cartilagem são fibrilações, fissuras e na fase tardia a exposição óssea. Os condrócitos formam aglomerados e sofrem uma diferenciação hipertrófica associada à mineralização da matriz extracelular e à angiogênese.

A membrana sinovial da OA exibe um espectro de alterações, incluindo uma hiperplasia acentuada da camada de revestimento, com um denso infiltrado celular composto em grande parte de linfócitos e monócitos, através de uma membrana sinovial que é espessada por tecido fibrótico.

O osso subcondral sobrecarregado é espessado como resultado do metabolismo anormal das células ósseas. Além disso, microfraturas e vasos recém-formados constituem rotas de troca entre osso e cartilagem.

Esquematicamente, a patogênese da OA pode ser organizada em torno de três círculos viciosos fisiopatológicos denominados “cartilagem-cartilagem”, “cartilagem óssea” e “cartilagem sinovial. Estresses mecânicos anormais induzem lesões de cartilagem e subsequentemente ativação de condrócitos. 

Os condrócitos ativados liberam níveis localmente altos de espécies reativas de oxigênio / nitrogênio (ROS / RNOS), metaloproteinases de matriz (MMP) (ie colagenases, agrecanases) e citocinas (ie interleucina (IL) -1, -6, -8 e fator de necrose tumoral TNF)).

Entre essas citocinas, a IL-1 desempenha um papel crítico ao ativar a via de sinalização da NF-B (Fator nuclear kappa B). Esta citocina, em associação com outras, estimula, de maneira autócrina e parácrina, os condrócitos a produzir mais MMP e radicais livres responsáveis ​​pela degradação da matriz extracelular. Este é o chamado círculo vicioso “cartilagem-cartilagem”. 

Os condrócitos também se comunicam com células ósseas subcondrais através de mediadores como o RANKL (Receptor Ativador do Fator Nuclear do Kappa-B Ligante), um fator que estimula a reabsorção óssea dos osteoclastos. Os estresses mecânicos também estimulam os osteoblastos a produzir localmente IL-6, mas também o fator de crescimento endotelial vascular (VEGF). O VEGF estimula a angiogênese, enquanto a IL-6, via canais e microfissuras, pode estimular os condrócitos suprajacentes para produzir metaloproteinases de matriz (MMPs). Desta forma é criado um círculo vicioso entre o osso subcondral e a cartilagem. 

A terceira alça patogênica é entre a cartilagem e a membrana sinovial. Fragmentos osteocondrais, produtos de degradação da matriz, mas também mediadores pró-inflamatórios (prostaglandina (PG) E2, óxido nítrico (NO) ou citocinas) desencadeiam inflamação da membrana sinovial e ativam células sinoviais para produzir mediadores catabólicos e inflamatórios que degradam diretamente a cartilagem ou estimulam condrócitos para produzir fatores catabólicos.

Portanto, médicos e outros profissionais de saúde precisam de modalidades terapêuticas eficientes que tenham como alvo as células ósseas, cartilaginosas e sinoviais. Além disso, avanços recentes na compreensão da doença revelaram uma importante interconexão entre co-morbidades, como síndrome metabólica e doenças cardiovasculares e OA, indicando que o tratamento da OA requer tratamento seguro, sem impacto deletério nessas comorbidades. 

O tratamento farmacológico é ainda dominado por medicamentos anti-inflamatórios não esteróides (AINEs) e paracetamol apesar do risco de efeitos adversos graves, especialmente quando administrados a longo prazo e principalmente em pessoas idosas com comorbidades. Além disso, a eficácia do acetaminofeno na osteoartrite é altamente contestada. 

Além dos tratamentos convencionais, existe uma classe de produtos chamados de medicamentos SYSADOA (symptomatic slow-acting drugs in osteoarthritis) – drogas sintomáticas de ação lenta em osteoartrite.  Atualmente, a única mistura investigada em ensaios controlados randomizados e controlados (RCT) é composta de frações insaponificáveis ​​de um terço de óleo de abacate e dois terços de óleo de soja. Esta mistura é comercializada como uma droga em muitos países e chamada Piascledine®300 (Laboratoires Expanscience, Courbevoie, França). Neste momento, são quatro ensaios controlados randomizados e controlados (RCT) bem conduzidos, todos apoiados pelo fabricante, demonstrando um efeito sintomático benéfico no tratamento da OA de quadril ou joelho.

Os Insaponificáveis de Soja e Abacate (ISA) são amplamente utilizados no tratamento da OA em todo o mundo e seus efeitos sobre os sintomas e mudanças estruturais nos tecidos articulares da OA foram bem documentados.

Na cultura de condrócitos, o ISA aumenta a síntese e o acúmulo de glicosaminoglicanos na matriz extracelular e inibe a produção de mediadores pró-inflamatórios e pró-catabólicos. Esses achados indicam claramente que o ISA pode atuar em diferentes facetas do metabolismo dos condrócitos na OA e tende a normalizá-los. Além disso, o ISA neutraliza o efeito deletério da IL-1 no metabolismo dos condrócitos. Alguns desses efeitos foram descritos como associados à inibição da translocação nuclear NF-B e aumentam a produção de fatores de crescimento transformadores β1 e β2 em condrócitos. Esses dados fornecem uma justificativa para explicar os efeitos estruturais observados em animais e humanos. Em animais, este efeito está associado a uma diminuição da Óxido Nítrico Sintetaze e MMP-13 e a um aumento dos níveis de TGF-1/2 no líquido sinovial. Isso corrobora perfeitamente o estudo in vitro e indica que, após ingestão oral, os ingredientes ou metabólitos ISA alcançam a articulação e modulam o metabolismo dos condrócitos.

Reconhece-se agora que o osso subcondral (SC) desempenha um papel importante no desenvolvimento da OA e é considerado um potencial alvo terapêutico. A esclerose óssea subcondral é suspeita de estar ligada à degradação da cartilagem, não só pela modificação das propriedades mecânicas do osso subcondral, mas também pela liberação de fatores bioquímicos que afetam o metabolismo da cartilagem. Numerosos estudos demonstraram que os osteoblastos do osso subcondral esclerótico são fenotipicamente diferentes dos osteoblastos não escleróticos. Os osteoblastos do osso subcondral esclerótico localizado logo abaixo da lesão da cartilagem principal produzem mais IL-6, IL-8, osteopontina, osteocalcina, TGF-,1 e colágeno tipo I do que os osteoblastos de a área adjacente não-esclerótica. Desde que foi demonstrado que os osteoblastos do osso subcondral esclerótico apresentavam um fenótipo alterado, eles constituem um potencial alvo terapêutico para drogas usadas no tratamento da OA. Curiosamente, a ISA diminui a síntese de TGF-ß1 pelos osteoblastos, um fator de crescimento postulado como um dos principais reguladores da formação óssea local. Em conjunto, estas observações indicam que o ISA pode ser eficaz nos osteoblastos subcondrais e favorecer um retorno à homeostase óssea.

Referências 

1. Kraus V, Blanco F, Englund M, et al. (2015) Call for standardized definitions of osteoarthritis and risk stratification for clinical trials and clinical use. Osteoarthr Cartil 23: 1233–1241. AIMS Medical Science Volume 5, Issue 1, 33–52. 

  1. Pesesse L, Sanchez C, Delcour JP, et al. (2013) Consequences of chondrocyte hypertrophy on osteoarthritic cartilage: potential effect on angiogenesis. Osteoarthr Cartil 21: 1913–1923.
  2. Berenbaum F (2013) Osteoarthritis as an inflammatory disease (osteoarthritis is not osteoarthrosis!). Osteoarthr Cartil 21: 16–21.
  3. Henrotin Y, Pesesse L, Lambert C (2014) Targeting the synovial angiogenesis as a novel treatment approach to osteoarthritis. Ther Adv Musculoskeletal Dis 6: 20–34.
  4. Henrotin Y, Pesesse L, Sanchez C (2012) Subchondral bone and osteoarthritis: biological and cellular aspects. Osteoporosis Int 23: 47–51.
  5. Sanchez C, Pesesse L, Gabay O, et al. (2012) Regulation of subchondral bone osteoblast metabolism by cyclic compression. Arthritis Rheumatol 64: 1193–1203.
  6. Sanchez C, Deberg M, Bellahcène A,et al. (2008) Phenotypic characterization of osteoblasts from the sclerotic zones of osteoarthritic subchondral bone. Arthritis Rheumatol 58: 442–455.
  7. Pesesse L, Sanchez C, Henrotin Y (2011) Osteochondral plate angiogenesis: a new treatment target in osteoarthritis. Jt Bone Spine 78: 144–149.
  8. Rahmati M, Mobasheri A (2016) Mozafari M. Inflammatory mediators in osteoarthritis: A critical review of the state-of-the-art, current prospects, and future challenges. Bone 85: 81–90.
  9. Bertuglia A, Lacourt M, Girard C, et al. (2016) Osteoclasts are recruited to the subchondral bone in naturally occurring post-traumatic equine carpal osteoarthritis and may contribute to cartilage degradation. Osteoarthr Cartilage 24: 555–566.
  10. Sanchez C, Gabay O, Salvat C, et al. (2009) Mechanical loading highly increases IL-6 production and decreases OPG expression by osteoblasts. Osteoarthritis Cartilage 7: 473–481.
  11. Henrotin Y, Pesesse L, Sanchez C (2009) Subchondral bone in osteoarthritis physiopathology: state-of-the art and perspectives. Biomed Mater Eng 19: 311–316.
  12. Hügle T, Geurts J (2017) What drives osteoarthritis?-synovial versus subchondral bone pathology. Rheumatology (Oxford) 56: 1461–1471.
  13. Veronese N, Trevisan C, De Rui M, et al. (2015) Osteoarthritis increases the risk of cardiovascular diseases in the elderly: The progetto veneto anziano study. Arthritis Rheumatol 68: 1136–1144.
  14. EymardF,ParsonsC,EdwardsMH,etal.(2015)Diabetesisariskfactorforkneeosteoarthritis progression. Osteoarthr Cartilage 23: 851–859.
  15. da Costa BR, Reichenbach S, Keller N, et, al. (2017) Effectiveness of non-steroidal anti-inflammatory drugs for the treatment of pain in knee and hip osteoarthritis: a network meta-analysis. Lancet 387: 2093–2105.
  16. Roberts E, Delgado Nunes V, Buckner S, et al. (2016) Paracetamol: not as safe as we thought? A systematic literature review of observational studies. Ann Rheum Dis 75: 552–559.
  17. Pavelka K, Coste P, Géher P, et al. (2010) Efficacy and safety of Piascledine 300 versus chondroitin sulfate in a 6 months treatment plus 2 months observation in patients with osteoarthritis of the knee. Clin Rheumatol 29: 659–670.
  18. Appelboom T, Schuermans J, Verbruggen G, et al. (2001) Symptoms modifying effect of avocado/soybean unsaponifiables (ASU) in knee osteoarthritis. A double blind, prospective, placebo-controlled study. Acta Rheumatol Scand 30: 242–247.
  19. Maheu E, Mazières B, Valat JP, et al. (1998) Symptomatic efficacy of avocado/soybean unsaponifiables in the treatment of osteoarthritis of the knee and hip: a prospective, randomized,
  20. Blotman F, Maheu E, Wulwik A, et al. (1997) Efficacy and safety of avocado/soybean
    unsaponifiables in the treatment of symptomatic osteoarthritis of the knee and hip. A prospective, multicenter, three-month, randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Rev Rhum Engl Ed 64: 825–834.
  21. Christensen R, Bartels EM, Astrup A, et al. (2008) Symptomatic efficacy of avocado-soybean unsaponifiables (ASU) in osteoarthritis (OA) patients: a meta-analysis of randomized controlled trials. Osteoarthritis Cartilage 16: 399–408.
  22. Maheu E, Cadet C, Marty M, et al. (2014) Randomised, controlled trial of avocado-soybean unsaponifiable (Piascledine) effect on structure modification in hip osteoarthritis: the ERADIAS study. Ann Rheum Dis 73: 376–384.
  23. Zhang W, Doherty M, Arden N, et al. (2005) EULAR evidence based recommendations for the management of hip osteoarthritis: report of a task force of the EULAR Standing Committee for International Clinical Studies Including Therapeutics (ESCISIT). Ann Rheum Dis 64: 669–681.
  24. McAlindon T, Bannuru R, Sullivan M, et al. (2014) OARSI guidelines for the non-surgical management of knee osteoarthritis. Osteoarthr Cartilage 22: 363–388.
  25. Msika P, Baudoin C, Saunois A, et al. (2008) Avocado/Soybean unsaponifiable, ASU EXPANSCIENCETM, are strictly different from the nutraceutical products claiming ASU appellation. Osteoarthr Cartilage 16: 1275–1276.
  26. Henrotin Y (2008) Avocado/soybean unsaponifiable (ASU) to treat osteoarthritis: a clarification. Osteoarthritis Cartilage 16: 1118–1119.
  27. Rancurel A (1985) Parfums, cosmétiques, Arômes 61: 91.
  28. FarinesM,SoulierJ,RancurelA,etal.(1995)Influenceofavocadooilprocessingonthenature
    of some unsaponifiable constituents. J Am Oil Chem Soc 72: 473–476.
  29. Baillet A (1995) Pharmaceutical expert report. Courbevoie, France: Pharmascience, 1995
    (unpublished data).
  30. Mauviel A, Daireaux M, Hartman DJ, et al. (1989) Effets des insaponifiables d’avocat/soja
    (PIAS) sur la production de collagène par des cultures de synoviocytes, chondrocytes
    articulaires et fibroblastes dermiques. Rev Rhum 56: 207–213.
  31. Mauviel A, Loyau G, Pujol JP (1991) Effets des insaponifiables d’avocat/soja (Piascledine) sur
    l’activitécollagénolytique de cultures de synoviocytes rhumatoides humains et de chondrocytes
    articulaires de lapin traités par l’interleukine-1. Rev Rhum 58: 241–248.
  32. HarmandMF(1985)Etudedefractiondesinsaponifiablesd’avocatetdesojasurlesculturesde
    chondrocytes articulaires. Gaz Med Fr 92: 1–3.
  33. Henrotin Y, Labasse A, Jaspar JM, et al. (1998) Effects of three avocado/soybean
    unsaponifiable mixtures on metalloproteinases, cytokines and prostaglandin E2 production by
    human articular chondrocytes. Clin. Rheumatol 17: 31–39.
  34. Henrotin Y, Sanchez C, Deberg MA, et al. (2003) Avocado/soybean unsaponifiables increase
    aggrecan synthesis and reduce catabolic and proinflammatory mediator production by human
    osteoarthritic chondrocytes. J. Rheumatol 30: 1825–1834
  35. Gabay O, Gosset M, Levy A, et al. (2008) Stress-induced signaling pathways in hyalin
    chondrocytes: inhibition by Avocado-Soybean Unsaponifiables (ASU). Osteoarthr Cartilage 16: 373–384.
  36. BoumedieneK,FelisazN,BogdanowiczP,etal.(1999)Avocado/soyaunsaponifiablesenhance the expression of transforming growth factor beta1 and beta2 in cultured articular chondrocytes. Arthritis Rheumatol 42: 148–156.
  37. Campbell IK, Wojta J, Novak U, et al. (1994) Cytokine modulation of plasminogen activator inhibitor-1 (PAI-1) production by human articular cartilage and chondrocytes: down-regulation by tumor necrosis factora. Biochim Biophys Acta 1226: 277–285.
  38. Khayyal MT, el-Ghazaly MA (1998) The possible “chondroprotective” effect of the unsaponifiable constituents of avocado and soya in vivo. Drugs Exp Clin Res 24: 41–50.
  39. Boileau C, Martel-Pelletier J, Caron J, et al. (2009) Protective effects of total fraction of avocado/soybean unsaponifiables on the structural changes in experimental dog osteoarthritis: inhibition of nitric oxide synthase and matrix metalloproteinase-13. Arthritis Res Ther 11: 41.
  40. Jaberi, F, Tahami, M, Torabinezhad S, et al. (2012)
  41. AltinelL,SaritasZK,KoseKC,etal.(2007)Treatmentwithunsaponifiableextractsofavocado and soybean increases TGF-beta1 and TGF-beta2 levels in canine joint fluid. Tohoku J Exp Med 211: 181–186.
  42. Cake M, Read R, Guillou B, et al. (2008) Modification of articular cartilage and subchondral bone pathology in an ovine meniscectomy model of osteoarthritis by avocado and soya unsaponifiables (ASU). Osteoarthr Cartilage 8: 404–411.
  43. Cinelli M, Guiducci S, Del Rosso A, et al. (2006) Piascledine modulates the production of VEGF and TIMP-1 and reduces the invasiveness of rheumatoid arthritis synoviocytes. Scand J Rheumatol 35: 346–350.
  44. Henrotin Y, Deberg M, Crielaard JM, et al. (2006) Avocado/soybean unsaponifiables prevent the inhibitory effect of osteoarthritic subchondral osteoblasts on aggrecan and type II collagen synthesis by chondrocytes. J Rheumatol 33: 1668–1678.
  45. SanchezC,DebergM,PiccardiN,etal.(2005)Osteoblastsfromthescleroticsubchondralbone downregulate aggrecan but upregulate metalloproteinases expression by chondrocytes. This effect is mimicked by interleukin-6, -1beta and oncostatin M pre-treated non-sclerotic osteoblasts. Osteoarthr Cartilage 13: 979–987.
  46. Sanchez C, Deberg M, Piccardi N, et al. (2004) Interleukin-1, interleukin-6 and oncostatin M stimulate normal subchondral osteoblast to induce cartilage degradation. Osteoarthr Cart 12: S98.
  47. Andriamanalijaona R, Benateau H, Barre PE, et al. (2006) Effect of interleukin-1beta on transforming growth factor-beta and bone morphogenetic protein-2 expression in human periodontal ligament and alveolar bone cells in culture: modulation by avocado and soybean unsaponifiables. J Periodontol 77: 1156–1166.
  48. Day JS, van der Linden JC, Bank RA, et al. (2004) Adaptation of subchondral bone in osteoarthritis. Biorheology 41: 359–368.
  49. WestacottCI,WebbGR,WarnockMG,etal.(1997)Alterationofcartilagemetabolismbycells from osteoarthritic bone. Arthritis Rheumatol 40: 1282–1291.
  50. Hilal G, Massicotte F, Martel-Pelletier J, et al. (2001) Endogenous prostaglandin E2 and insulin- like growth factor 1 can modulate the levels of parathyroid hormone receptor in human osteoarthritic osteoblasts. J Bone Miner Res 16: 713–721.
  51. Hilal G, Martel-Pelletier J, Pelletier JP, et al. (1999) Abnormal regulation of urokinase plasminogen activator by insulin-like growth factor 1 in human osteoarthritic subchondral osteoblasts. Arthritis Rheumatol 42: 2112–2122.
  52. Massicotte F, Fernandes JC, Martel-Pelletier J, et al. (2006) Modulation of insulin-like growth factor 1 levels in human osteoarthritic subchondral bone osteoblasts. Bone 38: 333–341.
  53. Hilal G, Martel-Pelletier J, Pelletier JP, et al. (1998) Osteoblast-like cells from human subchondral osteoarthritic bone demonstrate an altered phenotype in vitro: possible role in subchondral bone sclerosis. Arthritis Rheumatol 41: 891–899.
  54. Harris SE, Bonewald LF, Harris MA, et al. (1994) Effects of transforming growth factor on bone nodule formation and expression of bone morphogenetic protein 2, osteocalcin, osteopontin, alkaline phosphatase, and type I collagen mRNA in long-term cultures of fetal rat calvarial osteoblasts. J Bone Miner Res 9: 855–863.